Recibido: 15/11/2020
Revisado:
15/12/2020
Publicado: 31/01/2021
Ciclo biológico de Caligo Idomeneus (Nymphalidae)
bajo condiciones controladas con jardines verticales en Tarapoto
Biological
cycle of Caligo idomeneus (Nymphalidae)
Breeding, under controlled conditions with vertical gardens in Tarapoto
Doria Bolaños, Manuel Santiago1[0000-0001-9202-973X], Ramírez
Navarro, Manuel1[0000-0002-0822-0249] y Fachín
Ruíz, Grecia1[0000-0001-7770-7264]
1Universidad
Nacional de San Martín
Resumen. El trabajo fue ejecutado en el mariposario de la
UNSM-T, Morales, desarrollando una metodología para la cría de Caligo idomeneus (Lepidoptera: Nymphalidae)
bajo condiciones de mariposario, con jardines verticales y sustrato de
alimentación con heliconia y plátano. Los huevos tuvieron una duración de 7
días, la larva pasó por 5 estadíos, el primer instar
tuvo una duración de 2 a 3 días, no tuvo presencia de cuernos, el promedio de
ancho de cápsula cefálica fue de 0,38 mm y una longitud de 1,9 mm; en el segundo
instar se pudo apreciar la aparición de dos pequeños cuernos en la parte
anterior de la cabeza de 0,36 mm en promedio, tuvo un promedio de ancho de
cápsula cefálica de 0,56 mm y duración de 2,2 días y una longitud de 4,12 mm;
el tercer instar tuvo una duración de 3 días, con un ancho de cápsula cefálica
de 1,04 mm, longitud de cuernos de 5,74 mm y una longitud de 10,40 mm; el
cuarto instar tuvo una duración de 4,4 días y 4,27 mm en promedio de ancho de
cápsula cefálica, con una longitud de cuernos de 8,02 mm y una longitud de
18,07 mm; el quinto instar tuvo 6,26 mm de ancho de cápsula cefálica y tuvo una
duración de 8,86 días, con longitud de cuernos de 14,93 mm y 36,33 mm de
longitud; el promedio de pupa fue de 17,46 días. La duración del ciclo, desde
huevo a adulto fue de 66,90 días en promedio.
Palabras clave: caligo, cápsula
cefálica, heliconia, instar, mariposario
Abstract. The work was carried out in the butterfly
farm of the UNSM-T, Morales, developing a methodology for the breeding of
Caligo idomeneus (Lepidoptera: Nymphalidae)
under butterfly farm conditions, with vertical gardens and feeding substrate
with heliconia and banana. The eggs lasted 7 days, the larva went through 5
stages, the first instar lasted 2 to 3 days, had no horns, the average width of
the cephalic capsule was 0.38 mm and a length 1.9 mm; In the second instar it
was possible to see the appearance of two small horns in the anterior part of
the head of 0.36 mm on average, it had an average width of the cephalic capsule
of 0.56 mm and duration of 2.2 days and a length 4.12 mm; the third instar
lasted 3 days, with a head capsule width of 1.04 mm, horn length of 5.74 mm,
and a length of 10.40 mm; the fourth instar had a duration of 4.4 days and an
average width of the cephalic capsule 4.27 mm, with a horn length of 8.02 mm
and a length of 18.07 mm; the fifth instar had a head capsule width of 6.26 mm
and a duration of 8.86 days, with a horn length of 14.93 mm and a length of
36.33 mm; the average pupal period was 17.46 days. The duration of the cycle,
from egg to adult, was 66.90 days on average.
Keywords: butterfly house, caligo, cephalic capsule, heliconia,
instar
1
Introducción
Los insectos habitan la tierra desde
tiempos muy remotos. Se han encontrado fósiles que datan de del periodo
carbonífero superior de la era Paleozoica, es decir unos 250 a 300 millones de
años de antigüedad. La capacidad de reproducción de los insectos es
extraordinariamente grande. El número de huevos que deposita a cada hembra y el
corto ciclo de desarrollo que muchas veces presentan, determinar que el número
potencial de descendientes alcance características espectaculares en un corto
plazo (Zapata, 1986).
Perú posee una naturaleza muy singular y compleja.
Su variada geografía sumada a su diversidad de pisos ecológicos y climas, permite encontrar un mosaico de ecosistemas
distribuidos a lo largo y ancho de su territorio; motivo por el cual es
considerado un país megadiverso. (Prompex, IIAP y
GTZ, 2007).
Las mariposas forman parte de esta gran riqueza
biológica (Barth, 1991); son apreciadas por su gran belleza y su
utilidad como bioindicadoras del estado de salud de
los ecosistemas naturales (Barth, 1991), lo cual las convierte en un recurso natural de gran potencial que debe
ser aprovechado de manera sostenible. La crianza y comercialización de
mariposas en el Perú, especialmente la de especies de la Amazonía, podría
desarrollarse como una fuente nueva de ingreso para las comunidades locales y,
al mismo tiempo, como un aspecto interesante para el Ecoturismo.
La conservación de las mariposas no es una tarea
imposible. Su hábitat se ve agredido por las actividades del hombre en la
naturaleza, que provocan un retroceso en el número de plantas florales y
también en las posibilidades de reproducción y alimentación de las mariposas,
en tanto este trabajo de investigación
permitió desarrollar un protocolo de crianza de una especie de mariposa para
así poder contribuir hacia un manejo sustentable de la biodiversidad.
Los
objetivos del trabajo de investigación fueron obtener un protocolo para la
crianza intensiva de la mariposa, así como evaluar el ciclo biológico bajo condiciones controladas,
determinar la preferencia alimenticia y, la viabilidad y sostenibilidad de cría
de Caligo idomeneus (Lepidoptera: Nymphalidae) bajo condiciones controladas.
2
Materiales y
métodos
2.1
Ubicación e instalación del zoocriadero
(mariposario).
Se instaló un zoocriadero
(mariposario) en la Ciudad Universitaria – UNSM-T, con las instalaciones
apropiadas para la reproducción, como jardines verticales con troncos, con
riego por goteo y una pileta central. El mariposario fue dotado de las
condiciones ambientales requeridas por la mariposa como temperatura, humedad
relativa y porcentaje de sombra, protección y agua corriente (Cantarero, Canales,
Mendoza y Martínez, 2012).
2.2
Establecimiento de plantas hospederas.
a.
Identificación de
plantas hospederas
Se recopiló información sobre plantas hospederas en los diferentes
grupos de mariposas, así se instaló como planta hospedera a Heliconia caribaea,
Heliconia bihai y Musa paradisiaca, dentro del mariposario y fuera de él como plantas
de reserva (Constantino, 1996).
b.
Manejo
de planta hospedera
Se instaló plantas que sirvieron de alimento para
las larvas (De
Vries,1987), en el interior del área
destinada al zoocriadero (mariposario).
2.3
Obtención del plantel genético
Para iniciar la crianza de la mariposa se adquirió
un plantel de 10 adultos (machos y hembras), posturas y larvas de diferentes
estadios; a partir de estos, se obtuvo el primer plantel genético (f1), que sirvieron para
la investigación.
2.4
Manejo del plantel genético de Caligo
idomeneus en laboratorio
Para alimentar a los adultos fue necesario
combinarles fruta fresca con fruta en estado de fermentación (plátano, papaya,
naranja, etc.). También se agregó excremento animal, orina y carroña para dar
sales a los machos; esto es necesario para que alcancen su madurez
reproductiva, metodología planteada por Prompex, IIAP
y GTZ (2007). En caso de las larvas colectadas, fueron estabuladas en tapers de crianza con hojas de la panta hospedera hasta
lograr la emergencia de los adultos.
2.5
Crianza de Caligo idomeneus (Prompex, IIAP y
GTZ, 2007).
a.
Colecta
y manejo de huevos
Los huevos fueron colectados diariamente y colocados
en envases de plástico, rotulados y transportados al Laboratorio de Entomología
(Asto y Gutierrez, 2014).
b.
Manejo
de larvas
Se verificó que la larva recién eclosionada haya
comido el corion, posteriormente se las alimentó con hojas de la planta
hospedera. Se individualizó la crianza para ser evaluadas durante todo el ciclo
biológico. En los primeros estadios las orugas están dentro de contenedores de
plástico pequeños, con la mayor área de la tapa cubierta con una tela de tul
para la recirculación de aire. A partir del tercer estadio, las orugas fueron
trasladadas a envases más grandes con suficiente cantidad de plantas
hospederas.
c.
Manejo
de pupas
Una vez transformada en pupa, se procedió a
separarlas del lugar donde se encuentra cortando el pedazo de planta hospedera
donde se ha fijado, para luego con ayuda de un alfiler, se cuelgue en las cajas
de empupamiento.
d.
Obtención
de adultos en laboratorio
Una vez obtenidos los adultos fueron liberados en el
mariposario para que inicien la postura y, a partir de esas posturas, iniciar
el estudio del ciclo biológico dentro del mariposario, tales como cantidad de
postura, tiempo de incubación, estadios larvales, pupas, adultos y longevidad
de machos y hembras (Flores y Gil, 2012).
2.6
Técnicas de procedimiento y análisis de datos
Instalado el mariposario se procedió a la selección
de 10 parejas de adultos dentro del mismo, sobre esta muestra se obtuvieron los
datos de los indicadores. La obtención de datos de duración del estado larval,
duración del estado pupal, porcentaje de emergencia
de adultos, ratio sexual y longevidad de ambos sexos se obtuvieron en el
Laboratorio de Entomología. Esta actividad fue repetida por dos generaciones.
Los datos se presentan en tablas, con promedios y significancia. La comparación
de promedios se realizó aplicando estadística simple no paramétrica.
3
Resultados y
discusiones
3.1
Estadios de Caligo idomeneus en
días.
|
Tabla 1
|
De la Tabla 1 se
deduce los estadios de la mariposa: huevo promedio 7 días, 5 estadios larvales
con duración promedio de 20,52 días, pupa con duración promedio de 17,46 días y
longevidad de 21,92 días en promedio, total para el ciclo biológico de 66,90
días en promedio (61 a 63 días).
3.2
Del
tamaño de cápsula cefálica, longitud de cuernos y longitud de larvas
|
Tabla 2
*. Esto es un límite inferior de la significación verdadera. a. Corrección de significación de Lilliefors |
|||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 2, se observa la prueba de normalidad del estadístico
Shapiro-Wilk, ya que nuestros datos son menores a 50, en ella se indica que el
p. valor o “Sig” es mayor a 0,01 afirmándonos que los
datos siguen una distribución normal, permitiéndonos hacer una prueba
paramétrica.
|
Tabla 3
a. Predictores: (Constante), Longitud de larva |
En la Tabla 3, muestra
el R2 o Coeficiente de Determinación, que expresa la varianza de la variable
dependiente que esta explicada por la variable independiente, en este cuadro se
observa que tiene un valor de 1,1% de la variación de la cápsula cefálica esta
explicada por la longitud de larva, así mismo se muestra el Coeficiente de
Correlación de Pearson con 10,3% existiendo una correlación no significativa
entre las variables de estudio.
|
Tabla 4
a. Variable dependiente: Ancho de la Cápsula Cefálica b. Predictores: (Constante), Longitud de larva |
|||||||||||||||||||||||||||||||||
El Tabla 4 se
observa que p. valor > 0,05 que nos indica que no es posible construir un
modelo de regresión a partir de estas dos variables, por lo que se concluye que
las variables no están linealmente relacionadas.
|
Tabla 5
*.
Esto es un límite inferior de la significación verdadera. a. Corrección
de significación de Lilliefors |
||||||||||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 5, se
observa la prueba de normalidad del estadístico Shapiro-Wilk, ya que nuestros
datos son menores a 50, en ella se indica que el p. valor o “Sig” es mayor a 0,01 en lo que se refiere a longitud de
cuernos y longitud de larvas, afirmándonos que los datos siguen una
distribución normal, que nos permite hacer una prueba paramétrica, en cambio el
ancho de la cápsula cefálica el p. valor o “Sig” es menor
a 0,01 lo cual no se puede hacer una prueba paramétrica.
|
Tabla 6
a. Predictores: (Constante), Longitud de larva |
|||||||||||||||
En la Tabla 6, muestra el R2 o
Coeficiente de Determinación, que expresa la varianza de la variable
dependiente que esta explicada por la variable independiente, en este cuadro se
observa que tiene un valor de 9,8% de la variación de la longitud del cuerno
esta explicada por la longitud de larva, así mismo se muestra el Coeficiente de
Correlación de Pearson con 31.3% existiendo una correlación baja entre las
variables de estudio.
|
Tabla 7
a. Variable dependiente: Longitud de cuernos b. Predictores: (Constante), Longitud de larva |
|||||||||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 7 se observa que p.
valor > 0,05 lo que indica que no es posible construir un modelo de
regresión a partir de estas dos variables, por lo que se concluye que las
variables no están linealmente relacionadas.
|
Tabla 8
*. Esto es un límite inferior de la significación
verdadera. a. Corrección de significación de Lilliefors |
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 8, se observa la prueba
de normalidad del estadístico Shapiro-Wilk, ya que los datos son menores a 50,
en ella se indica que el p. valor o “Sig” es mayor a
0,01 en lo que se refiere al ancho de la cápsula cefálica, longitud de cuernos
y longitud de larvas, nos confirma que los datos siguen una distribución
normal, lo cual os permitirá hacer una prueba paramétrica.
|
Tabla 9
a. Predictores:
(Constante), Longitud de larva, Ancho de la Cápsula Cefálica |
En la Tabla 9, muestra el R2 o
Coeficiente de Determinación, que expresa la varianza de la variable
dependiente que esta explicada por la variable independiente, en este cuadro se
observa que tiene un valor de 14,7% de la variación de la longitud del cuerno
esta explicada por la longitud de larva, así mismo se muestra el Coeficiente de
Correlación de Pearson con 38.4% existiendo una correlación baja entre las
variables en estudio.
|
Tabla 10
a. Variable
dependiente: Longitud de cuernos b. Predictores:
(Constante), Longitud de larva, Ancho de la Cápsula Cefálica |
||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 10 se observa que p.
valor > 0,05 lo que indica que no es posible construir un modelo de
regresión a partir de estas tres variables, por lo que se concluye que las
variables no están linealmente relacionadas.
|
Tabla 11
*. Esto es un límite
inferior de la significación verdadera. a. Corrección de
significación de Lilliefors |
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 11, se observa la prueba
de normalidad del estadístico Shapiro-Wilk, puesto que los datos son menores a
50, en ella se observa que el p. valor o “Sig” es
mayor a 0,01 en lo que se refiere longitud de cuernos y longitud de larvas,
estos datos siguen una distribución normal, pudiendo hacer una prueba
paramétrica, en cambio el ancho de la cápsula cefálica, el p. valor es menor a
0,05 indicándonos que los datos no tienen una distribución normal y por consiguiente no se puede hacer una prueba paramétrica.
|
Tabla 12
a. Predictores: (Constante), Longitud de larva |
|||||||||||||||
En la Tabla 12, se observa el R2 o
Coeficiente de Determinación, que expresa la varianza de la variable
dependiente que esta explicada por la variable independiente, en este cuadro se
observa que tiene un valor de 5,1% de la variación de la longitud del cuerno
esta explicada por la longitud de larva, así mismo se muestra el Coeficiente de
Correlación de Pearson con 22,5% existiendo una correlación no significativa
para las variables en estudio.
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Tabla 13
a. Variable dependiente: Longitud de cuernos b. Predicciones: (Constante), longitud de larva |
|||||||||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 13 se observa que p.
valor > 0,05 lo que indica que no es posible construir un modelo de
regresión a partir de estas dos variables, por lo que se concluye que las
variables no están linealmente relacionadas.
|
Tabla 14
a. Corrección de
significación de Lilliefors |
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 14, se observa la prueba
de normalidad del estadístico Shapiro-Wilk, ya que los datos son menores a 50,
en ella se observa que el p. valor o “Sig” es mayor a
0,01 en lo que se refiere al ancho de la cápsula cefálica y longitud de
cuernos, estos datos siguen una distribución normal, pudiendo hacer una prueba
paramétrica, en cambio longitud de larvas, se observa que el p. valor es menor
a 0,05 lo cual nos dice que no tiene una distribución normal y por
consiguiente no se puede hacer una
prueba paramétrica.
|
Tabla 15
a. Predictores: (Constante), Ancho de la Cápsula Cefálica |
|||||||||||||||
En la Tabla 15, se observa el R2 o
Coeficiente de Determinación, que expresa la varianza de la variable
dependiente que esta explicada por la variable independiente, en este cuadro se
observa que tiene un valor de 1,8% de la variación de la longitud del cuerno
esta explicada por el ancho de la cápsula cefálica, así mismo se muestra el
Coeficiente de Correlación de Pearson con 13,3% existiendo una correlación no
significativa para las variables en estudio.
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Tabla 16
a. Variable dependiente: Longitud de cuernos b. Predictores: (Constante), Ancho de la Cápsula Cefálica |
|||||||||||||||||||||||||||||||||
En la Tabla 16 se
observa que p. valor > 0,05 lo que indica que no es posible construir un
modelo de regresión a partir de estas dos variables, por lo que se concluye que
las variables no están linealmente relacionadas.
4
Conclusiones
Caligo idomeneus (Wilson, 1992), (Buttreffy y Planets, 2016), es
una mariposa que presenta cinco estadios larvales y, al conocer su ciclo
biológico, permitirá criar intensivamente y con facilidad en condiciones de mariposario,
por lo que posee un buen potencial para la producción comercial.
Los
únicos sustratos de alimentación fueron Heliconius y Musa . Heliconia se reproduce fácilmente por lo que es un
excelente sustrato de alimentación (Bart, 1991).
Se
desarrolló una metodología adecuada para la reproducción tanto en laboratorio
como en el mariposario, logrando un impacto favorable para la posterior
producción masal.
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WILSON, E. (1992).
The Diversity of Life. New York: W. W. Norton & Co.
Anexos
|
Anexo
1. Ubicación del mariposario Fuente:
Doria, 2018. |
Anexo
2. Posturas de Caligo idomeneus Fuente:
Doria, 2018. |
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Anexo
3. Larvas de Caligo idomeneus Fuente:
Doria, 2018. |
Anexo
4. Adultos de Caligo idomeneus Fuente:
Doria, 2018. |
||
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Anexo
5. Liberación de adultos en mariposario con jardines horizontales. Fuente:
Doria, 2018. |
Anexo
6.Adultos alimentándose con miel en vasos con
sorbetes Fuente:
Doria, 2018. |
||
Conflicto de intereses
Ninguno.
Contribuciones de los
autores
Todos
con la misma participación